Drosophile (Drosophila suzukii)

Bioagresseur - Insecte - Insecte (bioagresseur)

Au cours des deux dernières décennies, Drosophila suzukii , communément appelée drosophile à ailes tachetées, est devenue l'un des ravageurs les plus destructeurs des petits fruits à l'échelle mondiale (Asplen et al ., 2015). Originaire d'Asie du Sud-Est, cette espèce s'est rapidement répandue en Europe, en Amérique du Nord, en Amérique du Sud et en Afrique, où elle a engendré d'importantes pertes économiques dans les systèmes de production fruitière (Cini, Ioriatti et Anfora , 2012 ; Deprá , Poppe, Schmitz, De Toni et Valente, 2014). Contrairement à la plupart des espèces du genre Drosophila qui colonisent les fruits endommagés ou en fermentation, D. suzukii possède un ovipositeur dentelé permettant aux femelles de pondre leurs œufs à l'intérieur de fruits sains et mûrs, ce qui rend sa gestion particulièrement difficile (Walsh, Bolda, Goodhue, Dreves, Lee, Bruck, Walton et Zalom , 2011).

Biologie et identification

Drosophila suzukii appartient à la famille des Drosophilidae. Les adultes sont généralement petits, mesurant environ 2 à 3 millimètres, avec des yeux rouges et un corps brun jaunâtre (Hauser, 2011). L'espèce est facilement reconnaissable à l'ovipositeur dentelé de la femelle, une structure en forme de scie qui lui permet de percer la peau des fruits sains lors de la ponte (Cini, Ioriatti et Anfora , 2012). Les mâles se distinguent par la présence d'une tache sombre près de l'extrémité de chaque aile, d'où leur nom commun de drosophile à ailes tachetées (Walsh et al ., 2011). Cet insecte a un cycle de vie rapide qui dure généralement de 10 à 14 jours dans des conditions favorables, permettant ainsi plusieurs générations se succédant chaque année (Asplen et al ., 2015). Les larves se développent à l'intérieur du fruit après l'éclosion, se nourrissant de la pulpe et rendant le fruit invendable en peu de temps (Lee, Bruck, Curry, Edwards et Haviland, 2011).

Cycle de vie de Drosophila suzukii

Gamme d'hôtes et dommages aux cultures

Ce ravageur s'attaque à une grande variété de fruits à peau fine, notamment les fraises (Fragaria spp.), les myrtilles (Vaccinium spp.), les framboises (Rubus spp.), les cerises (Prunus spp.) et les raisins (Vitis vinifera), tous reconnus comme hôtes de prédilection de Drosophila suzukii (Lee et al. , 2011 ; Cini, Ioriatti et Anfora , 2012). Les femelles pondent leurs œufs dans les fruits en maturation, où les larves se développent et se nourrissent, provoquant leur ramollissement et leur flétrissement, et favorisant les infections secondaires par des champignons et des bactéries ( Mazzetto , Marchetti et Isaia, 2015). Les dégâts sont souvent invisibles aux premiers stades, ce qui entraîne une contamination lors de la récolte et le rejet des produits sur les marchés (Walsh et al ., 2011). Dans les régions où les infestations sont graves, les pertes de rendement peuvent atteindre jusqu’à 80 % selon la culture et les conditions climatiques en vigueur (Asplen et al. , 2015).

Écologie et distribution

Décrite initialement au Japon en 1916, Drosophila suzukii s'est depuis répandue sur presque tous les continents, à l'exception de l'Antarctique, ce qui en fait l'un des ravageurs des fruits invasifs les plus prolifiques connus à ce jour ( Kanzawa , 1939 ; Asplen et al ., 2015). Son expansion mondiale est favorisée par plusieurs avantages biologiques et écologiques, notamment un taux de reproduction élevé, un large éventail d'hôtes, une capacité d'adaptation à diverses conditions climatiques et l'accélération des échanges de fruits et de matériel végétal liés au commerce international (Cini, Ioriatti et Anfora , 2012 ; Fraimout). et al. , 2017). La croissance démographique est généralement favorisée dans les régions chaudes et humides, mais l'espèce peut résister à des hivers doux et persister dans des environnements protégés tels que les serres et les microclimats abrités (Enriquez & Colinet , 2017).

Impact sur l'agriculture mondiale

La propagation rapide de Drosophila suzukii a perturbé les filières fruitières de nombreux pays, exerçant une pression considérable sur les systèmes de production et les chaînes d'approvisionnement (Asplen et al. , 2015). En Europe et aux États-Unis, les coûts annuels de lutte, combinés aux pertes de récoltes, se chiffrent à plusieurs centaines de millions de dollars en raison de l'infestation agressive des fruits commercialisables par ce ravageur (Bolda, Goodhue et Zalom , 2010 ; De Ros et al. , 2013). La menace est encore plus grave pour les petits exploitants agricoles des régions en développement, où les capacités de surveillance limitées et l'accès insuffisant aux mesures de lutte rendent les cultures fruitières extrêmement vulnérables (Mazzi et Dorn, 2012). Le changement climatique devrait intensifier ces difficultés en étendant les habitats favorables et en allongeant les périodes d'activité du ravageur, faisant de D. suzukii une préoccupation mondiale croissante pour l'horticulture et la sécurité alimentaire (Gutierrez et al ., 2016).

Détection et surveillance

La détection précoce est essentielle à la gestion des populations de D. suzukii . La surveillance s'effectue généralement à l'aide de :

Pièges à vinaigre de cidre ou à levure-sucre
Leurres commerciaux contenant des attractions à base de fermentation
Inspection visuelle des fruits et des feuilles en cours de maturation

Les pièges sont généralement placés au niveau de la canopée et vérifiés chaque semaine. Le suivi des résultats permet d'orienter le calendrier des mesures de lutte, de réduire les applications inutiles de pesticides et de faciliter l'intégration efficace des stratégies de contrôle.

Stratégies de gestion

Lutte biologique par utilisation de guêpes parasites

Parmi les ennemis naturels les plus prometteurs pour la gestion de Drosophila suzukii figurent deux guêpes parasitoïdes, Trichopria drosophilae et Leptopilina japonica. Ces insectes auxiliaires ont fait l'objet de nombreuses recherches pour leur capacité à réduire les populations de D. suzukii , et plusieurs études ont démontré leur efficacité aussi bien en laboratoire qu'en conditions réelles (Girod et al. , 2018 ; Wang et al. , 2020 ; Knoll, Herz et Vogt, 2022). Leur capacité à parasiter les stades nymphal et larvaire du ravageur en fait des candidats précieux pour l'intégration dans des stratégies de lutte biologique intégrée.

1. Trichoprie drosophiles (Hymenoptera Diapridae )

Trichopria drosophilae est un parasitoïde de pupe qui cible le stade nymphal de Drosophila suzukii dans les fruits ou le sol, ce qui en fait un ennemi naturel important dans les programmes de lutte biologique. La guêpe femelle recherche activement les fruits ou les substrats infestés contenant des pupes de D. suzukii et y dépose ses œufs. Au fur et à mesure de son développement, la larve parasitoïde consomme la pupe hôte de l'intérieur et empêche l'émergence de la mouche adulte (van Lenteren) . et al ., 2018 ; Knoll, Herz et Vogt, 2022 ; Wang, Nance et Daane, 2020). Ce mode d’action permet une réduction directe des populations de ravageurs et justifie son utilisation dans la lutte intégrée contre les ravageurs.

Trichopria drosophiles

2. Ganaspis cf. brasiliensis (Hymenoptera, Figitidae )

Une guêpe figitide du genre Ganaspis était le parasitoïde de Drosophila suzukii le plus fréquemment isolé lors d'études menées en Chine et au Japon, apparaissant dans tous les échantillons ayant permis l'émergence de parasitoïdes (Daane et al., 2016 ; Girod et al ., 2018). Cette espèce a systématiquement présenté les taux de parasitisme les plus élevés dans les deux pays, soulignant son association étroite avec le ravageur. Le même parasitoïde a également été retrouvé dans des échantillons prélevés dans la province du Hubei, où Drosophila subpulchrella a émergé en l'absence de D. suzukii , indiquant que G. cf. brasiliensis est également capable de parasiter cet hôte étroitement apparenté (Girod et al., 2018 ; Wang et al., 2020).

3. Leptopilina japonica (Hymenoptera : Figitidae )

Leptopilina japonica est un parasitoïde larvaire originaire d'Asie et l'un des ennemis naturels les plus fréquemment rencontrés chez Drosophila suzukii dans sa région d'origine. La guêpe femelle parasite les larves de D. suzukii pendant leur développement à l'intérieur des fruits, en y déposant un œuf directement. L'embryon du parasitoïde se nourrit de l'intérieur de la larve et finit par la tuer avant sa nymphose (Kasuya et al., 2013 ; Girod et al. , 2018 ; Wang, Nance et Daane, 2020). Cette interaction létale fait de L. japonica un candidat prometteur pour les programmes de lutte biologique contre D. suzukii .

Trichopria drosophiles comme moyen de lutte biologique :

En Europe, notamment en Suisse et en Italie, T. drosophilae a été élevé en masse et relâché dans les vergers de baies et de cerisiers dans le cadre de programmes de lutte biologique.
Les lâchers sur le terrain ont montré des taux de parasitisme allant de 20 à 60 %, en fonction des conditions climatiques et de la densité des ravageurs.

Avantages

Il s'intègre bien aux programmes de lutte intégrée contre les ravageurs (LIR) car il cible le ravageur sans affecter les espèces bénéfiques ni la qualité des fruits.

Comment l'obtenir :

T. drosophilae peut être obtenu auprès de fournisseurs commerciaux de biocontrôle en Europe (par exemple, Andermatt Biocontrol, Biobest et Koppert Biological Systems).
À des fins de recherche, les colonies peuvent être maintenues dans des insectariums de laboratoire en utilisant des pupes de D. suzukii comme hôtes.
Lors de l'importation, les utilisateurs doivent se conformer aux réglementations nationales en matière de quarantaine et de biosécurité afin de prévenir tout impact écologique non intentionnel.

Ganaspis cf. brasiliensis et Leptopilina japonica comme agents de lutte biologique :

L. japonica a été naturellement associée à D. suzukii au Japon, en Chine et en Corée du Sud et s'est récemment établie dans certaines parties de l'Amérique du Nord (Canada et États-Unis) en tant qu'espèce adventice.
Des études de terrain menées en Colombie-Britannique ont montré un taux de parasitisme larvaire pouvant atteindre 65 % dans les vergers non gérés, ce qui suggère qu'il peut contribuer de manière significative à la régulation des populations à long terme.

Avantages

Les chercheurs considèrent L. japonica comme un candidat prometteur pour la lutte biologique classique, où il pourrait être introduit dans les régions fortement touchées par D. suzukii .

Comment l'obtenir :

Actuellement, L. japonica est principalement disponible par le biais de collaborations de recherche ou de programmes de lutte biologique plutôt que par des fournisseurs commerciaux.
Des scientifiques en Europe et en Amérique du Nord étudient actuellement ses protocoles d'élevage à grande échelle et ses évaluations de biosécurité avant sa dissémination à plus grande échelle.
Les institutions intéressées peuvent demander des cultures par l'intermédiaire de réseaux de recherche internationaux tels que l'IOBC (Organisation internationale de lutte biologique).

Introduction d'un parasitoïde dans une ferme

Achetez auprès d'un fournisseur de biocontrôle certifié tel que Biobest , Koppert, Andernatt et les entreprises BioControl spécialisées dans les parasitoïdes diptères. On achète généralement T. drosophilae sous forme de :

pupes parasitées
ou jeunes adultes

Meilleur moment pour la sortie :

Au début de la saison, lorsque les populations de drosophiles à ailes tachetées commencent à se développer
Poursuivre les lâchers tout au long de la période de fructification (toutes les 1 à 2 semaines).

Exigences de température

Activité optimale : 18–25 °C
Éviter le rejet en cas de fortes pluies ou de chaleur extrême.

A. Lâchers en plein champ (vergers, exploitations de petits fruits, vignobles)

Étape 1 : Distribuer les conteneurs de déploiement

Placer les points de lâcher de parasitoïdes :

À proximité des zones de fructification
En bordure des champs (points chauds de SWD)
À proximité des endroits ombragés et humides (les parasitoïdes évitent la dessiccation)
Dans les zones où les fruits sont tombés ou endommagés

Densité recommandée :

1 500 à 3 000 individus par hectare et par lâcher
Répéter tous les 7 à 14 jours lors des pics d'infestation.

Étape 2 : Accrocher les cartes/gobelets de libération

Fixez-les aux branches à hauteur de la taille.
Évitez l'exposition directe au soleil.
Répartir uniformément (tous les 20 à 25 mètres)

Étape 3 : Réduire les interférences des pesticides

CESSEZ d'utiliser des insecticides à large spectre
Si nécessaire, choisissez des pulvérisations ciblant la drosophile à ailes tachetées compatibles avec les parasitoïdes (le spinosad est nocif ; certains biopesticides sont plus sûrs).

B. Introductions en serre ou en tunnel haut

Ces environnements offrent d'excellentes conditions d'établissement.

Méthode:

Relâcher les parasitoïdes à proximité des grappes de fruits
Placez les récipients dans les coins ombragés.
Maintenir l'humidité autour de 60 à 80 %.

Taux de diffusion :

500 à 1 000 parasitoïdes par 1 000 m²
Répéter toutes les 1 à 2 semaines

Améliorer leur établissement

Les parasitoïdes ont besoin de sources de nourriture et d'abris alternatifs.

Fournir:

Plantes nectarifères (sarrasin, alysse odorante)
Sprays sucrés (eau sucrée à 10 % pour l'alimentation des adultes)
Paillis ou débris de feuilles à l'endroit où la drosophile à ailes tachetées se nymphose

Cela augmente les taux de survie des parasitoïdes et de parasitisme.

Intégration avec d'autres outils de gestion (fortement recommandée)

Associer les rejets de T. drosophilae à :

Bonnes pratiques d'hygiène : enlever les fruits tombés ou trop mûrs
Piégeage de masse (pièges au vinaigre de cidre ou à levures)
Filets d'exclusion sur les cultures fruitières
stockage frigorifique immédiatement après la récolte

Ces méthodes permettent de maintenir les populations de drosophiles à ailes tachetées à des niveaux gérables par les parasitoïdes.

Suivre le succès du parasitisme

Pour confirmer l'établissement :

Comment vérifier :

Récupérez les pupes de la drosophile à ailes tachetées (SWD) dans le sol ou sur les fruits tombés.
Élevez-les dans des conteneurs
Compter l'émergence des parasitoïdes par rapport à l'émergence des mouches

Un bon taux d'établissement :

Le parasitisme varie de 15 à 40 % selon la saison et l'habitat.

Témoignages :

En Suisse, des agriculteurs collaborant avec l’institut de recherche Agroscope ont signalé des diminutions notables des niveaux d’infestation de D. suzukii après des lâchers répétés de T. drosophilae.

Ce qu'ils ont fait :

Des lâchers de T. drosophilae ont été effectués chaque semaine ou toutes les deux semaines pendant la période de fructification.
Lâcher 1 500 à 3 000 parasitoïdes adultes par hectare.
Utilisation de plusieurs points de déclenchement par champ pour assurer une large couverture.
Des lâchers continus du début de l'été jusqu'à la fin des récoltes.

Pourquoi ça a fonctionné :

T. drosophilae parasite le stade nymphal de D. suzukii dans le sol et les fruits tombés.
Des lâchers continus ont permis aux parasitoïdes de constituer une population stable dans les vergers et les plantations de petits fruits.
Les agriculteurs ont constaté une diminution du taux de survie des pupes de la drosophile à ailes tachetées, ce qui a entraîné une réduction de l'émergence des adultes.

2. Une étude de Knoll et al. (2022) a montré que la guêpe s'établissait bien en serre et en plein champ, maintenant une régulation naturelle des ravageurs même après l'arrêt des lâchers. Méthode utilisée par Knoll et al. (2022) pour lutter contre Drosophila suzukii

Knoll et al. (2022) ont mené l'une des études européennes les plus importantes sur l'utilisation, l'établissement et l'efficacité à long terme de Trichopria drosophilae , un parasitoïde de pupe de Drosophila suzukii . Leur objectif était de vérifier si des lâchers répétés permettraient au parasitoïde de s'établir, de persister et de continuer à assurer une lutte biologique naturelle même après l'arrêt des lâchers. Ils ont combiné des expériences contrôlées en serre et des essais en plein champ.

Lâchers répétés de Trichopria drosophilae

L'élément central de leur stratégie était le lâcher progressif du parasitoïde, aussi bien en serre qu'en plein champ.

Ce qu'ils ont fait :

Lâchers de T. drosophilae en plusieurs cycles hebdomadaires.
Chaque lâcher a introduit plusieurs centaines à plusieurs milliers de parasitoïdes adultes.
Les lâchers ont été effectués pendant des périodes de forte disponibilité de chrysalides de D. suzukii .
Les parasitoïdes ont été relâchés directement à proximité des plantes fruitières et des zones à forte concentration de drosophiles à ailes tachetées.

But:

Pour augmenter le nombre de parasitoïdes jusqu'à ce qu'ils puissent s'établir d'eux-mêmes dans l'environnement et commencer à supprimer naturellement les pupes.

Fourni des pupes hôtes pour l'établissement initial

Étant donné que T. drosophilae parasite les pupes de la drosophile à ailes tachetées (SWD), les chercheurs se sont assurés qu'il y avait suffisamment de pupes de D. suzukii présentes lors des premiers lâchers.
Ils ont procédé ainsi :
Autoriser l'infestation contrôlée des fruits (serres).
Utilisation des infestations naturelles de drosophile à ailes tachetées (vergers en plein champ).
Fournir des substrats artificiels pour la nymphose dans certaines expériences.
- Cela a permis de créer un approvisionnement continu en hôtes, favorisant ainsi la croissance de la population de parasitoïdes.
Taux de parasitisme mesurés et persistance des populations
- Pour confirmer l'établissement, Knoll et al. ont collecté périodiquement des pupes de SWD et ont vérifié :
Combien de parasitoïdes ont émergé
Combien de SWD ont émergé
On a cherché à savoir si les parasitoïdes persistaient longtemps après la fin des lâchers.
- Ils ont constaté que l'émergence des parasitoïdes se poursuivait même des mois après le dernier lâcher, ce qui indique un succès :
- ✔ établissement ✔ reproduction ✔ hivernage (en extérieur)
- Cela a démontré le potentiel de contrôle biologique classique.
Évaluation de la suppression à long terme des populations de SWD
Knoll et al. ont mesuré l'impact sur la densité de SWD en comparant :
parcelles témoins (sans parasitoïdes)
parcelles traitées (avec lâchers)
- Résultats:
Les populations de SWD étaient significativement plus faibles dans les parcelles traitées.
Le parasitisme a persisté même après l'arrêt des lâchers.
Dans les serres, la suppression a été particulièrement forte en raison des conditions stables.
Sur le terrain, T. drosophilae a survécu à l'hiver et est réapparu au printemps.
Cela a prouvé que le parasitoïde pouvait assurer une suppression naturelle autosuffisante.

Pratiques culturelles et de suivi intégrées

Bien que l'objectif principal ait été le lâcher de parasitoïdes, ils ont également mis en œuvre :
- Pièges de surveillance : Pour suivre la densité des drosophiles adultes au fil du temps.
- Assainissement standard : Enlever les fruits tombés réduit les sites de reproduction et augmente l'efficacité des parasitoïdes.
- Structure de l'habitat : Fournir des microhabitats (sol, litière de feuilles) où les pupes s'accumulent, favorisant le parasitisme .

Recherche et innovation

La lutte contre Drosophila suzukii à l'échelle de l'exploitation agricole bénéficie désormais des recherches sur les pièges sémiochimiques , les approches génétiques et les défenses végétales. Cependant, ces idées doivent encore être traduites en actions simples que les agriculteurs peuvent appliquer directement dans leurs vergers et exploitations de petits fruits. L'objectif est de réduire les dégâts sur les fruits, de diminuer l'utilisation de pesticides et de maintenir les rendements grâce à des méthodes durables et peu coûteuses.

1. Utilisez des pièges chimiques semi-finis abordables autour de la ferme.

Des chercheurs ont identifié des composés volatils issus des fruits qui attirent les adultes de D. suzukii . Les agriculteurs peuvent exploiter cette méthode en installant des pièges à leurre, artisanaux ou commerciaux, en bordure de champ et dans le verger. Des bouteilles en plastique percées de petits trous, appâtées avec une solution de levure sucrée ou un mélange de vinaigre et de fruits, permettent de surveiller et de capturer les mouches adultes. Un renouvellement hebdomadaire régulier de l'appât préserve l'efficacité des pièges. Cela réduit la ponte sur les fruits en maturation et aide les agriculteurs à détecter l'arrivée du ravageur précocement, avant que les dégâts ne s'aggravent.

2. Associer le piégeage à des pratiques d'assainissement :

Les fruits infestés sont riches en composés volatils qui attirent davantage de mouches D. suzukii . L'élimination des fruits tombés, des baies trop mûres et des tas de déchets interrompt le cycle de reproduction de ce ravageur. Les agriculteurs qui combinent le piégeage à une assainissement rigoureux de leurs champs constatent souvent une réduction de la prolifération des populations, car les mouches perdent leurs sites de reproduction.

3. Sélectionner et gérer des variétés de plantes tolérantes.

Certaines variétés fruitières ont une peau plus ferme, une acidité plus élevée ou des profils volatils naturels qui découragent la ponte de D. suzukii . En attendant le développement de lignées résistantes par les programmes de sélection, les agriculteurs peuvent d'ores et déjà choisir des variétés à maturation plus précoce ou à peau plus résistante, réduisant ainsi les périodes d'infestation.

4. Favoriser les micro-organismes bénéfiques et les endophytes végétaux.

Des études montrent que certains endophytes microbiens peuvent influencer la fermeté des fruits et leurs émissions de composés volatils, les rendant ainsi moins attractifs pour D. suzukii . Les agriculteurs peuvent favoriser ce phénomène naturellement en utilisant des thés de compost, des amendements organiques et des inoculants microbiens qui renforcent la vigueur des plantes. Des plantes saines produisent des fruits plus fermes, ce qui ralentit la pénétration des larves.

5. Appliquer des produits botaniques ou biologiques en cas de pression accrue.

Lorsque le nombre de pièges augmente, il est possible d'utiliser des produits de lutte biologique à faible toxicité, tels que des produits à base de neem, des préparations à base de spinosad ou des champignons entomopathogènes. Ces produits ciblent les adultes ou les larves, ont un faible impact sur les ennemis naturels et s'intègrent parfaitement à la lutte intégrée. Leur efficacité est accrue lorsqu'ils sont utilisés conjointement avec un piégeage efficace et des mesures d'assainissement appropriées.

6. Intégrer la gestion de l'environnement de la culture :

Un couvert végétal dense et une forte humidité favorisent la survie de D. suzukii . La taille visant à améliorer la circulation de l'air, la réduction de l'irrigation excessive et la récolte précoce des fruits limitent ces conditions favorables. Les exploitations qui ajustent le microclimat constatent souvent une diminution du nombre d'œufs par fruit.

7. Les outils futurs pourraient inclure la lutte génétique.

Bien qu'encore en développement, les stratégies génétiques telles que le lâcher de mâles stériles ou la suppression génétique des populations pourraient un jour compléter les pratiques agricoles courantes. D'ici là, les agriculteurs peuvent se préparer en se tenant informés grâce aux programmes de vulgarisation agricole.

Conclusion

Drosophila suzukii a révolutionné la gestion des ravageurs des petits fruits. Contrairement à la plupart des espèces de drosophiles qui infestent les fruits endommagés, elle utilise un ovipositeur dentelé pour pondre ses œufs dans les fruits sains en cours de maturation, ce qui la rend particulièrement destructrice. Sa reproduction rapide, son large éventail d'hôtes et son adaptabilité à divers climats ont favorisé sa propagation mondiale et créé des défis constants pour les producteurs sur de nombreux continents. Ce ravageur produit plusieurs générations qui se chevauchent chaque saison, ce qui accroît les dégâts et complique les efforts de lutte (Lee et al., 2011 ; Asplen et al., 2015).

La lutte chimique offre un succès limité car les larves se développent à l'intérieur des fruits, les adultes restent présents tout au long de la saison et les risques de résistance ne cessent d'augmenter. Les exigences réglementaires en matière de réduction des résidus de pesticides soulignent davantage la nécessité d'adopter des approches durables (Haye et al., 2016). Une gestion efficace repose donc sur des stratégies coordonnées intégrant les connaissances écologiques, les solutions biologiques et des cadres politiques favorables.

La lutte biologique s'est révélée être l'une des solutions les plus prometteuses. Trichopria drosophilae, parasitoïde des pupes, et Leptopilina japonica, parasitoïde des larves, ciblent différents stades de développement du ravageur. Ces deux espèces ont démontré une grande efficacité lors d'études en laboratoire et sur le terrain, et présentent un parasitisme constant qui permet une suppression durable des ravageurs (Wang et al., 2016 ; Nomano et al., 2017 ; Knoll et al., 2022). Leur complémentarité renforce les programmes de lutte biologique intégrée et réduit la dépendance aux produits chimiques.

D. Suzuki Cela reflète une évolution plus large vers une gestion durable des ravageurs, où les espèces envahissantes nécessitent des réponses à plusieurs niveaux. L'intégration de parasitoïdes clés tels que T. drosophilae et L. japonica représente une étape essentielle pour réduire les pertes économiques, diminuer l'utilisation de pesticides et bâtir des systèmes de production fruitière plus résilients.

Références

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Annexes

S'attaque aux cultures

Drosophile suzukii sur vigne